1. 試驗原理

NEATstik®利用ProteaseTag®技術特異性檢測痰液樣本中的活性NE。

NEATstik®由封裝在塑料盒內的側流試紙組成。試紙條由膜和墊組成，置于固體載體上，應用結合物和兩條反應線：供試(T)線和對照線

(C)線。結合物是ProteaseTag®（旨在與活性NE特異性相互作用）和有色金顆粒的混合物。供試(T)細胞系由可檢測NE的抗體和對照(C)細胞系可檢測結合物組成。

樣品稀釋后，向NEATstik®的樣品端口加入小體積，開始檢測過程。稀釋樣本沿試紙移動，并與結合物相互作用。結合物中的ProteaseTag®將與樣本中存在的活性NE結合，沿試紙上行并與供試品結合

(T)線。過量結合物將與對照(C)線結合。

檢測線的外觀確認了樣品中存在的活性NE高于預先設定的閾值。

質控線的外觀證實檢測正確進行。

2. 試劑盒組分

每個復合包裝盒包含10個套件。

每個試劑盒包含：

密封箔袋中的1×NEATstik®側流檢測

1 xNEATstik®樣本稀釋緩沖液(20 mL)1 x痰液稀釋罐

1 x雙球吸管1 x刻度吸管1 x說明書

需要但未提供的材料

痰液收集罐稱量秤或天平秒表/計時器

4. 試驗程序

收集樣品

采集樣本進行檢測時，要求患者將痰液（不是唾液）咳入痰液采集壺（未提供）。建議立即檢測樣品。

樣品制備

加入NEATstik®前，必須稀釋痰液樣本。

1. 將痰液稀釋罐的底部放在稱量天平上。稱量天平去皮重（零）。

2. 將痰液稀釋罐保持在稱量天平上，使用抹刀（連接在痰液稀釋罐的蓋子上）將1-2 g痰液從痰液收集罐中轉移到痰液稀釋罐中。
3. 記錄轉移痰液的重量(g)。痰液稀釋罐應保持在稱量天平上。
4. 使用以下計算公式計算NEATstik®樣品稀釋緩沖液產生10倍稀釋所需的量：

痰液重量 = g

x 9

= g NEATstik®

樣品稀釋緩沖液

5. 稱量天平去皮重（零）。
6. 使用刻度移液管，將NEATstik®樣本稀釋緩沖液轉移至痰液稀釋罐中，直至計算重量。
7. 將蓋子放在痰液稀釋罐上，并確保其擰緊。
8. 倒置痰液稀釋槽，使痰液與緩沖液混合

10次。

6. 檢測方法（續）

執行測試

1. 從鋁箔包裝中取出NEATstik®，置于水平面上，觀察窗朝上。
2. 取下痰液稀釋罐的蓋子。
3. 使用雙球吸管吸取稀釋痰液樣本。盡量確保

讀取結果和質量控制

如果檢測成功完成，對照(C)線將以紅線顯示（顏色強度可能不同）。如果質控(C)線不可見，則結果無效，應使用新樣本和新的檢測試劑盒重復檢測。

如果TEST(T)線可見，則確認痰液樣本中存在大于預設閾值的活性NE。

7. 性能特征

使用58份冷凍痰液樣本評估NEATstik®檢測的性能。使用ProteaseTag®Active NE免疫測定法(ProAxsis Ltd)定量測定活性NE。

• 42份樣本有痰液NE濃度

< 8µg/mL = 陰性

• 16份樣本有痰液NE濃度

> 8µg/mL = 陽性

該檢測對16份NE定量高于8µg/mL的痰液樣本中的16份給出了陽性結果（100%靈敏度），對42份NE定量低于8µg/mL的痰液樣本中的36份給出了陰性結果（86%特異性）。

8. 使用限制

僅用于稀釋痰液樣本

為獲得準確結果，請遵循提供的說明

NEATstik®結果必須結合其他臨床和患者進行評價

13. 處置

痰液樣本和使用的檢測組分具有潛在生物危害性。根據當地臨床廢物指南適當處置使用過的檢測試劑盒和痰液樣本。

14. 參考文獻

1. Pham,C.(2008)International Journal of Biochemistry&Cell Biology,40(6-7),1317-1333.
2. Sandhaus,R.&Turino,G.(2013)COPD,10(S1):60-63.
3. Sagel,S. et al(2012)American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine,186(9):857-865
4. Mayer-Hamblett,N. et al(2007)美國呼吸與重癥醫學雜志，175:822-828
5. Chalmers,J.D. et al(2016)American Journal of Respiratory and Critical Care Medicine 195:1384–1393.

僅溶液-無痰液“結塊”。

醫療保健專業人員可獲得的數據。

NEATstik®不能定量痰液樣本中的活性NE。

9. 定量活性中性粒細胞彈性蛋白酶