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BirA生物素蛋白連接酶標準反應試劑盒

更新時間:2019-11-26      點擊次數:7428

BirA生物素蛋白連接酶標準反應試劑盒

 

產品套裝編號:BirA500-30ug

產品內容

規格包裝

BirA biotin-protein ligase

10uL*1(3mg/ml)

10xBiomixA

1.5mL*1

10xBiomixB

1.5mL*1

BIO-200

1.5mL*1

 

  • 產品概述: 

  BirA生物素蛋白連接酶標準反應試劑盒由AVIDITY公司生產,生物素連接酶(Biotin Protein Ligase)用于催化生物素化反應,將生物素連接到特定的蛋白上。反應原理是通過ATP三磷酸腺苷中間體(生物素5’-腺苷酸)以和靶向的方式將d-生物素共價連接到生物素受體肽/蛋白上。

  強烈建議使用AviTag氨基酸序列,而不是其他生物素化肽序列。BirA酶生物素化AviTag序列天然底物(BCCP)反應速率兩倍,并且比使用的其它肽序列多一個數量級或更多。與肽序列的其他生物素化相比,AviTagTM需要更少的酶量和更短的孵育時間,從而小化與蛋白酶和蛋白質不穩定性相關的輔助問題。

來源:重組蛋白(Escherichia coli

純度:

 純度>95%,無可檢測的蛋白酶活性

應用:

生物素受體蛋白的生物素化。

儲存條件:

干冰運送,解凍后分裝,避免反復凍融。

長期保存置于-80℃,短期內使用置于-20℃,頻繁使用可短時置于4℃。在4℃條件下保存三個月??沙?gt;90%的酶活性。

10×Biotin Ligase Buffer A、B和D-Biotin儲存于-20℃,可反復凍融,,生物素蛋白連接酶BirA,4℃存放一個月,活性保留>80。長期保存-80度,每次解凍,酶活性降低10%。

產品成分

BirA biotin-protein ligase:(3mg/ml)

10×Biotin Ligase Buffer A: 0.5 M Bicine,pH 8.3  

10×Biotin Ligase Buffer B: 100 mM ATP, 100 mM MgOAc, 500 μM D-Biotin

D-Biotin:500 µM D-Biotin

 

反應體系示例(250ul)(底物濃度 :≤40uM))

 

反應物組成

體積(ul)

終濃度

AviTag蛋白多肽底物(10nmol)

199.17

40uM

BirA biotin-protein ligase(3mg/ml)

0.83

0.01mg/ml

10xBiomixA

25

1x

10xBiomixA

25

1x

    (*10 nmol AviTag’d底物需2.5μg BirA, 根據底物濃度按倍數放大本體系)

     注意:有些情況可能有必要濃縮您的底物以滿足40μM標準。

 

相關產品信息

產品組成BirA

小包裝規格型號BirA500-30ug

小包裝規格型號

BirA500

大包裝規格型號

BirA-300ug

BirA biotin-protein ligase

10uL*1(3mg/ml)

20uL*2(1mg/ml)

10uL*10(3mg/ml)

10xBiomixA

1.5mL*1

1.5mL*1

1.5mL*10

10xBiomixB

1.5mL*1

1.5mL*1

1.5mL*10

BIO-200 

1.5mL*1

1.5mL*1

1.5mL*10

 

影響因素

1  AviTag的底物肽(蛋白質)濃度與生物素化效率  

 

為了確保生物素化的效率,建議在終的反應混合物中AviTag的底物盡可能接近40μM,反應混合物中的底物濃度越低, 生物素化完成的時間越長。例如,40μM時在30-40分鐘內*生物素化,但在4μM時,使用同樣的方法需要5個多小時。底物濃度與BirA酶活性的關系如圖A。

    2  反應緩沖體系對BirA酶活性的影響

 

 

氯化鈉(>100 mM)、甘油(>5% W/V)、硫酸銨(>50 mM)等許多常見的緩沖液成分會抑制生物素連接酶的活性。當底物蛋白(多肽)確有必要使用這些試劑時,應盡量降低濃度。底物中可含有Tris(pH 8.0), 宜濃度為10 mM,不超過50 mM。

3 底物濃度與BirA酶的數量關系

    

通常,對于每10 nmol底物(40μM),我們建議2.5μg BiRA 生物素化條件3030 - 40分鐘或室溫下約1小時?;蛘?/span>4過夜,ATP4時水解更慢,但該反應過程可能會因為ATP降解引起的不*生物素化,需額外補充ATP解決。

 

BufferA和BufferB已經針對生物素化反應進行優化,底物濃度不超過40µM。如果底物濃度

達40~80µM,則要加入額外的生物素,反應如下:1份10×BiotinLigaseBufferA,1份

10×Biotin Ligase Buffer B,7份酶底物混合物和1份D-Biotin。如果底物濃度超過80 µM,請酌情稀釋底物或與技術人員聯系獲取幫助。

 

4  BirA酶純度

 BirA酶經過測試,顯示沒有可測量的蛋白酶污染。較長的孵育時間確實會帶來目標蛋白被蛋白酶水解的風險因此建議使用短的*生物素化目標蛋白的孵育時間。較長的孵育時間溶液中的ATP會隨時間水解,降低可用的生物素化反應的ATP。因此,快速完成反應將有利于實現大生物素化。

 

 FAQ:

Q:如何阻止蛋白酶降解底物?

          A:本產品的生物素連接酶經嚴格質量控制,沒有蛋白酶活性。如果用于生物素化的底物蛋白是未經純化的粗提蛋白,建議加入適量的蛋白酶抑制劑,以防止在生物素化的過程中發生降解。

 Q:如何確定參與反應的適本酶量及反應條件?

          A:由于不同蛋白性質差別很大、生物酶反應存在一定的不確定性,說明書中所述反應條件并不*適用于所有蛋白。建議用戶可以進行預實驗:可先取少量蛋白,分成若干份相同量的底物,加入不同稀釋度的酶,相應量的Buffer A、 B, 30℃ 1 h (或其它時間、溫度條件)反應,以SDS-PAGE Loading Buffer終止反應后,電泳并轉移至NC膜上進行Western Blotting檢測(BSA封閉后直接以市售的HRP-Streptavidin孵育, DAB顯色),比較生物素化情況,選取適條件。由于Streptavidin與Biotin結合力*,因而用于Western Blotting檢測時,只需很少生物素化蛋白即可觀察結果。

 Q:如果我的底物蛋白濃度相當低且不容易濃縮,進行生物素化時該怎么辦?

          A:在進行相同底物量的酶促反應時加入更多的酶并適當延長反應時間。但有一個問題不容忽視,酶是蛋白質,在酶量增加的時候,引入體系中的蛋白量亦增加了,如果后續的實驗不容許出現很大量雜蛋白,那么延長反應時間將是僅有的選擇。

Q:是否有陽性對照可以參考?

  A:有陽性對照(BIS-300陽性對照底物試劑盒

   BIS-300試劑盒包含*生物素化的MBP-AviTag™融合蛋白標準品和未生物素化的MBP-AviTag™融合蛋白可用作BirA生物   素連接酶作用下蛋白生物素化程度的比較,用于SDS-PAGE凝膠分析或蛋白質印跡分析。

 

 

 

 

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